ИЗУЧЕНИЕ БИОСОВМЕСТИМОСТИ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ (ПОЛИМЕТИЛМЕТАКРИЛАТ И БИСФЕНОЛ-А-ДИГЛИЦИДИЛМЕТАКРИЛАТ) НА МОДЕЛИ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК СТРОМЫ РОГОВИЦЫ

Цель. Определить пролиферативную активность клеток стромы роговицы (КСР) донора трупа в присутствии полимерных материалов (полиметилметакрилата (ПММА), бисфенол-А-глицедилметакрилата (бис-ГМА)) в условиях клеточной культуры (in vitro).

Материал и методы. Работа основана на методе клеточного культивирования клеток стромы роговицы доноров-трупов в условиях нормотермии. В качестве объекта исследования были взяты образцы полимерных материалов бис-ГМА, предоставленные ООО «Репер-НН» (г. Нижний Новгород) (группы 1-4), и ПММА, предоставленные ЭТП «МНТК» (г. Москва) (группа 5). В контрольной группе полимерный материал не использовали (группа 6). Использовалась культура КСР, соответствующая 7-му пассажу, сроки культивации составили 7 дней. Культивирование проводилось в условиях нормотермического культивирования с использованием стандартной ростовой среды DMEM/F12 с добавлением эмбриональной телячьей сыворотки и антибиотиков. Смена ростовой среды проводилась каждые 3 дня. КСР ежедневно извлекали из 4 лунок каждой группы, подсчитывали и оценивали динамику пролиферации с применением статистического критерия Вилкоксона.

Результаты. В первый день наблюдения статистически достоверной разницы в уровне пролиферации между группами наблюдения выявлено не было. К концу срока наблюдения выявлена статистически достоверная разница между уровнями пролиферации кератоцитов в присутствии исследуемых образцов. По интенсивности пролиферации материалы располагались следующим образом (в порядке снижения признака): (контроль, К5) >К1> (К3, К4) >К2. Между материалами К3 и К4 статистически достоверной разницы выявлено не было (p>0,05).

 Заключение. Среди изученных нами материалов в наименьшей степени пролиферации клеток стромы роговицы способствовал материал группы 2, наиболее способствующий – материал группы 5, остальные материалы (группы 1, 3, 4) не проявили однозначной тенденции по отношению к пролиферации КСР. 

1. Борзенок С.А. Медико-технологические и методологические основы эффективной деятельности Глазных тканевых банков России в обеспечении операций по сквозной трансплантации роговицы: Дис. … д-ра мед. наук. – М., 2008. – 306 с.

2. Верзин А.А. Интраламеллярная кератопластика биополимерной линзой для лечения буллезной кератопатии и коррекции афакии (клинико-экспериментальное исследование): Дис. … канд. мед. наук. – М., 2002. – 192 с.

3. Гурбанов Р.С. Интрастромальная кератопластика в коррекции миопии и миопического астигматизма при кератоконусе: Дис. … канд. мед. наук. – М., 2010. – 116 с.

4. Измайлова С.Б. Медико-технологическая система хирургического лечения прогрессирующих кератэктазий различного генеза: Дис. … д-ра мед. наук. – М., 2014. – 314 с.

5. Калашников И.Н., Урьяш В.Ф., Треушников В.В., Пастухов Н.В. Свойства некоторых новых терапевтических систем и лечебных материалов на основе акриловых сополимеров // Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского. – 2010. – № 2 (2). – С. 516-522.

6. Федоров С.Н. Имплантация искусственного хрусталика. – М., Медицина, 1977. – 208 с.

7. Фрешни Р.Я. Культура живых клеток. Практическое руководство. – М., Бином, 2010. – 714 с.

8. Amzallag T., Pynson J. Lens biomaterials for cataract surgery // J. Fr. Ophtalmol. – 2007. – Vol. 30, № 7. – P. 757-767.

9. Du Y., Funderburgh M.L., Mann M.M. et al. Multipotent stem cells in human corneal stroma // Stem. Cells. – 2005. – Vol. 23, № 9. – P. 1266-1275.

10. Du Y., Roh D.S., Funderburgh M.L. et al. Adipose-derived stem cells differentiate to keratocytes in vitro // Mol. Vis. – 2010. – Vol. 10, № 16. – P. 2680-2689.

11. Fundenburg M.L., Mann M.M., Fundenburg J.L. Keratocyte phenotype is enhanced in the absence of attachment to the substratum // Mol. Vis. – 2008. – Vol. 14. – P. 308-317.

12. Lakshman N., Kim A., Petroll W.M. Characterisation of corneal keratocyte morphology and mechanical activity within 3-D collagen matrices // Exp. Eye Res. – 2010. – Vol. 90, № 2. – P. 350-359.

13. Long C.J., Poth M.R., Tasheva E.S. et al. Fibroblast growth factor-2 promotes keratin sulfate proteoglycan expression by keratocytes in vitro // J. Biol. Chem. – 2000. – Vol. 275, № 18. – P. 13918-13923.

14. Reichl F.X., Seiss M., Kleinsasser N. et al. Distribution and excretion of BisGMA in guinea pigs // J. Dent. Res. – 2008. – Vol. 87, № 4. – P. 378-380.

15. Scott S.G., Jun A.S., Chakravareti S. Spher formation from corneal keratocyte and phenotype specific markers // Exp. Eye Res. – 2011. – Vol. 93, № 6. – P. 898-905.

16. Zhang S., Espander L., Imhof K.M. Bunnell Differentiation of Human Adipose – derived Stem Cells along the Keratocyte Lineage in vitro // J. Clin. Exp. Ophthalmol. – 2013. – Vol. 4, № 270. – P. 11435.